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CKX53倒置显微镜荧光升级及活死细胞双色荧光染色(AOPI法)检测解决方案

更新时间:2026-07-29点击次数:24

OLYMPUS CKX53倒置显微镜荧光升级及
/死细胞双色荧光染色(AO/PI法)检测应用解决方案

基于 CKX-UVBG-E 电动智能荧光模块的标准化细胞活性评估指南

CKX53倒置显微镜荧光升级及活死细胞双色荧光染色(AOPI法)检测解决方案

1:加装 CKX-UVBG-E 电动智能荧光模块后的 OLYMPUS CKX53 倒置荧光显微镜整机结构

一、 方案背景与 AO/PI 双色荧光检测原理

在细胞生物学、组织工程、肿瘤学评估及原代细胞提取过程中,精准鉴别细胞存活状态是核心检测步骤。吖啶橙(Acridine Orange, AO)与碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)联合使用的双色荧光染色法,能够特异性标记质膜完整性。相较于传统台盼蓝明场染色,AO/PI 双色荧光法能够有效排除原代样品中的无核红细胞、细胞碎片及杂质干扰,展现出更高的检测特异度与识别准确率。

1.1 AO PI 荧光探针的作用机制

荧光探针

膜穿透特性

胞内分子靶点与反应机制

激发/发射光谱及 CKX-UVBG-E 适配通道

吖啶橙 (Acridine Orange, AO)
(绿色荧光)

膜透过型
(脂溶性)

能够自由穿透膜结构完整的活细胞与死细胞质膜,与双链DNA嵌合结合发出强绿色荧光

Ex: 470/35 nm / Em: 525/45 nm
(匹配 B 激发组 / FITC)

碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI)
(红色荧光)

非膜透过型
(仅透过受损膜)

无法穿越膜结构完整的活细胞质膜;仅当细胞死亡质膜破损时穿入胞内,与双链DNA嵌合发出红色荧光(产生 FRET 掩盖/吸收绿光)

Ex: 545/25 nm / Em: 605/65 nm
(匹配 G 激发组 / TRITC)

二、 CKX53 倒置显微镜荧光升级方案(CKX-UVBG-E 模块)

常规奥林巴斯 CKX53 显微镜主要用于明场及相衬活细胞观察。通过加装专为 CKX53 量身开发的 CKX-UVBG-E 电动智能荧光模块,无需更换显微镜主体即可快速升级为高性能倒置荧光显微平台:

2.1 高度集成一体化与内陷槽紧凑安装设计

CKX-UVBG-E 模块将大功率 LED 光源与荧光激发块高度集成于单一盒体内,采用了内陷安装槽与壳体卡扣设计,结构紧凑且外部固定螺丝少。升级后荧光模块极薄,不遮挡载物台下方空间,确保物镜转换顺畅无阻。

CKX53倒置显微镜荧光升级及活死细胞双色荧光染色(AOPI法)检测解决方案

2CKX-UVBG-E 荧光模块在 CKX53 载物台下方的内陷式紧凑安装结构

2.2 电动智能通道切换与 1.44 英寸彩色大屏

模块配备 1.44 英寸彩色显示屏,以彩色方柱和百分比数值清晰显示当前通道状态及激发光亮度。实体按键与编码标记让通道切换一目了然;配合防滑指压旋钮,单指即可快速旋转与点击操控,极大提升了实验效率。

3CKX-UVBG-E 1.44英寸彩色大屏与单指防滑多功能操控旋钮

2.3 长寿命 LED 光源与通道光强智能记忆

采用大功率 LED 光源(使用寿命 > 30000 小时),即开即用,无需传统高压汞灯繁琐的预热与冷却等待。系统支持多达 4 色独立荧光通道,内置通道光强记忆功能——当在 B 通道(检测 AO 绿光) G 通道(检测 PI 红光)之间切换时,模块能自动还原之前设定的光照强度,避免重复微调导致样本荧光淬灭。

CKX53倒置显微镜荧光升级及活死细胞双色荧光染色(AOPI法)检测解决方案

4CKX-UVBG-E 电动智能荧光模块外观与显示控制面板

2.4 低风噪主动循环散热与软件联动扩展

模块内置低风噪、低震动风扇进行主动循环风散热,有效保障 LED 灯珠与滤光片的温度稳定,防止光谱中心波峰漂移。同时,模块支持外部协议通讯与软件联动控制,可无缝对接电脑端的图像采集与分析软件。

CKX-UVBG-E 模块升级的核心优势】
多片透镜高效聚光系统:提供高强度且分布均匀的激发光斑,高品质带通滤光片确保独立通道荧光纯净明亮。

丰富通道选配:标配 UVDAPI)、BFITC/GFP)、GTRITC/CY3)三色组,并可选配 YmCherry)、RCY5)等,满足多样化荧光探针需求。

三、 AO/PI 双色荧光检测标准解决方案流程

为确保升级后的 CKX53 显微镜在进行 AO/PI 双色检测时获得高信噪比与高重复性的数据,建议遵循以下标准化实施流程:

步骤 1:试剂准备与细胞样品洗涤

工作液配制:使用无荧光背景的 PBS 缓冲液将 AO PI 母液稀释成双染色工作液(推荐终浓度:AO 5–10 μg/mLPI 10–20 μg/mL),现配现用并避光保存。

样品洗涤:取待测贴壁或悬浮细胞,用温育的 PBS 轻轻洗涤 1–2 次,消除培养基成分及残余血清对荧光染色的干扰。

步骤 2:样品混合染色与短时温育

染色混合:将 AO/PI 混合工作液与细胞悬液按 1:1 比例充分混合(或直接加至细胞培养孔中),使染色液均匀覆盖细胞。

避光温育:室温避光孵育 5–10 分钟。由于 AO/PI 与核酸结合迅速,建议在 20 分钟内完成上样与图像采集。

步骤 3CKX53 上样与明场/相衬快速定位

放置样品:将染色后的血球计数板或培养皿置于 CKX53 载物台上,使用 Universal Holder 固定。

相衬寻焦:开启 LED 明场光源,利用 iPC 整合相衬系统(4X–40X 切换无需换相衬环)快速寻找代表性视野并完成对焦。

步骤 4:电动智能荧光通道切换与采集

B 通道采集(活细胞):通过 CKX-UVBG-E 单指按键一键切换至 B 激发通道(FITC),LED 光源开启,采集绿色胞质/胞核荧光图像(绿光细胞为活细胞)。

G 通道采集(死细胞):按下按键快速切换至 G 激发通道(TRITC),智能还原预设红光功率,采集红色胞核荧光图像(红光细胞为死细胞/膜受损细胞)。

步骤 5:图像合成与细胞存活率定量评估

图像传输与叠加:通过相机接口将图像传输至电脑,利用配套分析软件对 FITC 绿光通道与 TRITC 红光通道进行 Overlay/Merge 通道叠加。

存活率计算:分别统计视野内的绿光活细胞数(Live)与红光死细胞数(Dead),计算细胞存活率:Vitality (%) = [Live / (Live + Dead)] × 100%

四、 典型图像结果与数据评估

CKX53 优良光学系统与升级后 CKX-UVBG-E 模块的支撑下,AO/PI 双色染色呈现出分明的形态学与荧光光谱特征:

5:升级荧光系统后获取的高信噪比多色细胞荧光观察成果图谱

观察模式/通道

标本荧光形态特征

CKX53 升级后成像优势

B 激发通道 (FITC)
(Ex 470/35nm)

活细胞
质膜完整,胞质/胞核呈亮绿色荧光

大功率 LED 高效聚光,全视野激发均匀;独立带通滤光片使绿光纯洁无杂光。

G 激发通道 (TRITC)
(Ex 545/25nm)

死细胞 / 膜受损细胞
质膜破损,胞核呈现显著红色荧光

光强记忆功能确保切换无延迟,高截止滤光片有效抑制背景自发荧光,死细胞红核边界清晰。

双通道 Fusion 叠加 /
相衬 Overlay

综合存活率评估
准确区分活细胞、死细胞及无核碎片

电动切换顺畅,多通道叠加无焦平面与位置偏离;图像高信噪比为精准计数提供依据。

五、 规范操作注意事项与设备保养建议

5.1 染色观察时间控制:AO/PI 与核酸结合迅速,染色混合后建议在 20 分钟内完成观察。时间过长可能导致 AO 浓度游离变化或 PI 被活细胞少量吞噬造成假阳性。

5.2 LED 激发强度适度调控:充分利用 CKX-UVBG-E 模块的无级调光与光强记忆功能,在拍摄对比度满足的前提下适当调低激发功率,减缓荧光探针淬灭。

5.3 风扇风道防堵与清洁:保证荧光模块侧面主动散热风扇的风道通畅,避免遮挡,定期用干燥气吹清理风扇网罩灰尘。

5.4 镜片与部件擦拭维护:若载物台或物镜沾染培养基或染色液,应及时用 75% 乙醇湿润无尘纸轻轻擦拭,保持优良的透光性能与设备卫生。